2. 建議使用高保真酶進行目的片段的 PCR 擴增，并摸索退火溫度，優(yōu)化反應體系和程序。

PCR產物的純化回收
1.PCR 反應后，產物應當進行瓊脂糖凝膠電泳鑒定，判斷是否存在目的大小的條帶；

2.推薦使用切膠回收的方式純化 ( 切膠時間最好控制在 3min 內，避免紫外照射對 DNA 的損傷 )，回收濃度使用 NanoDrop/OneDrop 等儀器檢測，濃度應當≥ 30ng/μl，并跑膠鑒定是否僅存在目的條帶；

目的片段連接至載體

1.連接反應體系按照說明書要求投入，各組分投入體積≥ 1μl，若濃度過高可稀釋后使用；

2.連接反應溫度可嘗試 25°C或 37°C，時間 5min，若不長克隆或克隆空載體 / 假陽性，時間可嘗試延長至 30min；

感受態(tài)轉化涂板

1.連接產物轉化的感受態(tài)細胞選擇使用 DH5α、Fast-T1 等克隆用化學感受態(tài)細胞；

2.感受態(tài)細胞不可反復凍融使用，-80°C取出后建議一次用完；

3.重組產物體積與感受態(tài)細胞體積的比例為 1:10，推薦 10μl 重組產物加入至 100μl 感受態(tài)細胞或 5μl 重組產物加入至 50μl 感受態(tài)細胞；

4.熱激時間：按照感受態(tài)細胞說明書操作進行；

5.平板抗生素抗性：平板使用抗性與轉化的載體抗性需保持一致；

6.菌液涂板體積：將菌液離心（2500×g，3min），移液槍吸取丟棄多余 LB 培養(yǎng)基，保留100μl 重懸后全部涂板；或吸取合適體積涂板。

單克隆菌落PCR鑒定

1.挑取平板中體積大小適中的單克隆菌落，避免選擇過大或過小的單克隆菌落；

2.挑取數(shù)個單克隆菌落進行鑒定分析；

3.挑取的菌落放入已添加 10μl ddH2O 的 1.5ml 或 2ml EP 管中溶解混勻后，吸取 1-2μl 作為PCR 反應（10/20μl 體系）模板；

4.推薦使用一對分別位于片段和載體的上下游引物進行 PCR 鑒定。